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您現(xiàn)在的位置: 醫(yī)學(xué)全在線 > 理論教學(xué) > 基礎(chǔ)學(xué)科 > 人體寄生蟲學(xué) > 正文:寄生蟲學(xué)實(shí)驗(yàn)診斷技術(shù)
    

寄生蟲學(xué)實(shí)驗(yàn)診斷技術(shù):病原檢查及免疫論斷及新技術(shù)應(yīng)用

 

 。ǘ)血液檢查

  血液檢查是診斷瘧疾絲蟲病的基本方法。涂制血膜用的載玻片用前需經(jīng)洗滌液處理,自來水、蒸餾水沖洗,在95%酒精中浸泡,擦干或烤干后使用。

  洗滌液配制:常用玻璃器皿的洗滌液為鉻酸洗液,含工業(yè)濃硫酸100ml,重鉻酸鉀80g,水1000ml。先用冷水將重鉻酸鉀溶化,然后徐徐加入濃硫酸,同時(shí)用玻璃棒攪拌。

  1.檢查瘧原蟲

 、湃⊙c涂片:用75%酒精棉球消毒耳垂,待干后用左手拇指與食指捏著耳垂下方,并使耳垂下側(cè)方皮膚繃緊,右手持取血針、刺破皮膚,擠出血滴。薄、厚血膜可涂制在同一張玻片上(圖21-7)。

圖21-7 薄厚血膜制作步驟

  1)薄血膜制片:在載玻片1/3與2/3交界處蘸血一小滴,以一端緣光滑的載片為推片,將推片的一端置于血滴之前,待血液沿推片端緣擴(kuò)散后,自右向左推成薄血膜。操作時(shí)兩載片間的角度為30~45℃,推動(dòng)速度適宜。理想的薄血膜,應(yīng)是一層均勻分布的血細(xì)胞,血細(xì)胞間無(wú)空隙且涂血膜末端呈掃帚狀。

  2)厚血膜制片:載玻片的另一端(右)1/3處蘸血一小滴(約10mm³),以推片的一角,將血滴自內(nèi)向外作螺旋形攤開,使之成為直徑約0.8~1cm,厚薄均勻的厚血膜。厚血膜為多層血細(xì)胞的重疊,約等于20倍薄血膜的厚度。

 、乒潭ㄅc染色:血片必須充分晾干,否則染色時(shí)容易脫落。固定時(shí)用小玻棒蘸甲醇或無(wú)水酒精在薄血膜上輕輕抹過。如薄、厚血膜在同一玻片上,須注意切勿將固定液帶到厚血膜上,因厚血膜固定之前必須先進(jìn)行溶血?捎玫喂艿嗡诤裱ど希こ驶野咨珪r(shí),將水倒去,晾干。在稀釋各種染液和沖洗血膜時(shí),如用緩沖液則染色效果更佳。緩沖液的配制如下:

  磷酸氫二鈉液:磷酸氫二鈉(Na2HPO4)無(wú)水0.464g或Na2HPO4· 2H2O 11.867g或Na2HPO4 · 7H2O17.872g或Na2HPO4· 2H2O23.877g,蒸餾水1000ml。

  M/15磷酸二氫鉀液:磷酸二氫鉀(Na2HPO4)9.073g,蒸餾水1000ml。

  使用時(shí)將上述原液按下頁(yè)表配成不同的pH緩沖液:

pH M/15KH2PO4(ml) M/15Na2HPO4(ml) 蒸餾水(ml)
6.8 4.9 5.1 90
7.0 6.3 3.7 90
7.2 7.3 2.7 90

  染色時(shí)臨時(shí)配成pH7.0或7.2的緩沖液。

  常用的染色劑有姬氏染劑(Giemsa's stain)、瑞氏染劑(Wright's  stain)。

  1)Giemsa染色法:此法染色效果良好,血膜褪色較慢,保存時(shí)間較久,但染色需時(shí)較長(zhǎng)。

  染液配制:姬氏染劑粉1g,甲醇50ml,純甘油50ml。將姬氏染粉置于研缽中(最好用瑪瑙研缽),加小量甘油充分研磨,加甘油再磨,直至50ml甘油加完為止,倒入棕色玻瓶中。然后分幾次用少量甲醇沖洗缽中的甘油染粉,倒入玻瓶,直至50ml甲醇用完為止,塞緊瓶塞,充分搖勻,置65℃溫箱內(nèi)24小時(shí)或室溫內(nèi)一周過濾。醫(yī)學(xué).全在.線www.med126.com

  染色方法:用pH7.0~7.2的緩沖液,將姬氏液稀釋;比例約為15~20份緩沖液加1份姬氏染液。用蠟筆劃出染色范圍,將稀釋的姬氏染液滴于已固定的薄、厚血膜上,染色半小時(shí)(室溫),再用上述緩沖液沖洗。血片晾干后鏡檢。

  2)快速姬色染色法:姬氏染液1ml,加緩沖液5ml,如前法染色5分鐘后用緩沖液沖洗,晾干后鏡檢。

  3)Wright染色法:此法操作簡(jiǎn)便,適用于臨床診斷,但甲醇蒸發(fā)甚快,掌握不當(dāng)時(shí)易在血片上發(fā)生染液沉淀,并較易褪色,保存時(shí)間不長(zhǎng)。多用于臨時(shí)性檢驗(yàn)。

  染液配制:瑞氏染劑粉0.1~0.5g,甲醇97ml,甘油3ml。將瑞氏染劑加入甘油中充分研磨,然后加入少量甲醇,研磨后倒入瓶?jī)?nèi),再分幾次用甲醇沖洗研缽中的甘油溶液,倒入瓶?jī)?nèi),直至用完為止,搖勻,24小時(shí)后過濾待用。一般1、2周后再過濾。

  染色方法:瑞氏染液含甲醇,薄血膜不需先固定;而厚血膜則需先經(jīng)溶血,待血膜干后才能染色。染色前先將溶過血的厚血膜和薄血膜一起用蠟筆劃好染色范圍,以防滴加染液時(shí)四溢。滴染液使覆蓋全部厚、薄血膜上,30秒至1分鐘后用滴管加等量的蒸餾水,輕輕搖動(dòng)載玻片,使蒸餾水和染液混合均勻,此時(shí)出現(xiàn)一層燦銅色浮膜(染色),3~5分鐘后用水緩慢地從玻片一端沖洗(注意勿先倒去染液或直對(duì)血膜沖洗),晾干后鏡檢。

  2.檢查微絲蚴

 、判迈r血片檢查:晚間9時(shí)至次晨2時(shí)取血1滴滴于載玻片上,加蓋片,在低倍鏡下觀察,發(fā)現(xiàn)蛇形游動(dòng)的幼蟲后,仍須作染色檢查,以確定蟲種。

 、坪裱z查:厚血膜的制作、溶血、固定與姬氏液染色同瘧原蟲。但需取血3滴,也可用Delafieid蘇木素染色法染色。該染液的配制方法如下:

  蘇木素1g溶于純酒精或95%酒精10ml中,加飽和硫酸鋁銨(8%~10%)100ml,倒入棕色瓶中,瓶口用兩層紗布扎緊,在陽(yáng)光下氧化2~4周,過濾,加甘油25ml和甲醇25ml,用時(shí)稀釋10倍左右。

  已溶血、固定的厚血膜在德氏蘇木素液內(nèi)染10~15分鐘,在1%酸酒精中分色1~2分鐘,蒸餾水洗滌1~5分鐘,至血膜呈藍(lán)色,再用1%伊紅染色0.5~1分鐘,以水洗滌2~5分鐘,晾干后鏡檢。

 、腔钗⒔z蚴濃集法:在離心管內(nèi)裝蒸餾水半管,加血液10~12滴,再加生理鹽水混勻,離心沉淀3分鐘,取沉渣檢查;蛉§o脈血1ml,置于盛有3.8%枸櫞酸鈉0.1ml的試管中,搖勻,加水9ml,俟紅細(xì)胞溶化后,離心(3000rpm/min)2分鐘,倒去上液,加水再離心,取沉渣鏡檢。

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