1 材料與方法
1.1 主要試劑
雷帕霉素(rapamycin,福建省微生物研究所),環(huán)孢素A(CsA,Novartis公司),普樂可復(FK506,日本藤澤制藥公司),5氟尿嘧啶(5Fu,上海旭東海普藥業(yè)有限公司),噻唑藍(MTT,Sigma公司),Coulter DNAPrep Reagents Kit(Beckman Coulter公司),Quantikine Mmouse VEGF Immunoassay試劑盒(R&D Systems公司),Rat AntiMouse CD34(Southern Biotechnology Associates, Inc.)等。
1.2 方法
1.2.1 噻唑藍比色實驗(MTT)
體外培養(yǎng)小鼠H22肝細胞癌株,分別與不同濃度的RPM(0.01mg/L、0.1mg/L、1mg/L)、CsA(1mg/L)、FK506(0.1mg/L)和5Fu(10mmol/L)在96孔培養(yǎng)板共同孵育48h后,每孔加入MTT(5mg/mL)20μL,繼續(xù)孵育4h,終止培養(yǎng),離心后棄去上清液,每孔加入二甲基亞砜(DMSO)150μL,振蕩10min,使活細胞內(nèi)的藍紫色結(jié)晶物充分溶解。選擇490nm波長,以酶聯(lián)免疫檢測儀檢測各孔的吸光度值(A),記錄結(jié)果醫(yī).學全.在.線網(wǎng)站gydjdsj.org.cn。
1.2.2 細胞的周期變化測定
體外培養(yǎng)小鼠H22肝細胞癌株分別與不同濃度的RPM(0.01mg/L、0.1mg/L、1mg/L)、CsA、FK506和5Fu在24孔培養(yǎng)板共同孵育48h后終止孵育,700mL/L的冷乙醇固定60min。離心,PBS洗滌2次,加100μL的PBS重懸細胞,每份待檢細胞數(shù)1×106,分別加入DNAPrep Stain 400μL,常溫下染色20min。離心洗滌后將樣品用300目尼龍膜過濾。用流式細胞儀檢測,multicycle分析軟件對樣本進行細胞周期分析。
1.2.3 VEGF含量的測定
用ELISA法測定各組上清液中VEGF含量。將培養(yǎng)瓶內(nèi)對數(shù)生長的小鼠肝癌細胞H22,以含20mL/L小牛血清的RPMI1640細胞培養(yǎng)液配成1×108 cells/L的細胞懸液,以每孔2×104 cells、200μL接種于96孔培養(yǎng)板上孵育24h,離心棄去孔內(nèi)上清液,按實驗設計以含不同濃度藥物的培養(yǎng)液分別加入各孔內(nèi),每一濃度重復6孔,孵育48h。離心,每孔吸取100μL上清液作為測試樣品-80℃冷凍保存?zhèn)溆。依照試劑說明準備所有的試劑、工作標準品和樣品,通過分光光度儀讀取各孔的A值,并依此值繪制標準曲線,計算各孔內(nèi)樣品的VEGF濃度。
1.2.4 體內(nèi)實驗
各組小鼠首先建立H22肝細胞癌皮下移植瘤模型,皮下移植瘤模型建立后當天完成C57BL/6小鼠→BALB/c小鼠異體皮膚移植。RPM[1.5mg/(kg·d)、4.5mg/(kg·d)]、CsA[20mg/(kg·d)]、FK506[5mg/(kg·d)]和5Fu[50mg/(kg·d)]灌胃14d,觀察皮片存活情況,模型建立24d剖殺小鼠,留取血清及腫瘤組織。計算各組腫瘤體積,ELISA法測定各組小鼠血清中VEGF含量,通過CD34免疫組化染色測定各組腫瘤組織的微血管密度(MVD)。對照組用CMCNa 0.005mg/mL灌胃。
1.2.5 統(tǒng)計學方法
采用SPSS11.0統(tǒng)計軟件,實驗數(shù)據(jù)采用均數(shù)±標準差(±s)表示,組間比較用方差分析、LSD檢驗、Dunnet t2 t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2 結(jié)果